Providencia (genre) — Wikipédia

Providencia est un genre de bacilles Gram négatifs (BGN) de la famille des Morganellaceae, proche des genres Proteus et Morganella avec lesquels il forme la tribu des Proteeae. Son nom provient de la ville de Providence aux États-Unis (État de Rhode Island)[1].

Quelques espèces sont des pathogènes humains occasionnels, notamment Providencia alcalifaciens qui est l'espèce type du genre.

En 1962, le bactériologiste américain William H. Ewing (d) propose la première description formelle de ce genre bactérien en le distinguant clairement du genre Proteus avec lequel il était jusque-là confondu[2]. Il place alors ces deux groupes dans la tribu des Proteeae, elle-même rattachée aux Enterobacteriaceae d'après des critères phénotypiques[3].

En 2016, sur la base de travaux de phylogénétique moléculaire, le genre Providencia est déplacé vers la famille des Morganellaceae nouvellement créée[1],[4].

Caractéristiques

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Morphologie et culture

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Ce sont des bactéries mobiles par ciliature péritriche c'est-à-dire qu'elles se déplacent à l'aide de flagelles disposés sur toute la périphérie de la cellule bactérienne. Comme tous les Enterobacterales leur type respiratoire est anaérobie facultatif[3].

Ce ne sont pas des BGN non exigeants, c'est-à-dire que leur croissance est possible sur la plupart des milieux de base et ne nécessite ni facteurs de croissance ni conditions de culture spécifiques. En pratique les géloses non sélectives (GNO, GTS etc.) et les géloses « entériques » utilisés pour isoler les BGN (MacConkey, EMB etc.) suffisent à les maintenir. Par ailleurs deux milieux différentiels ont été développés pour faciliter l'identification des Providencia dans les prélèvements de selles : la gélose PAM[5] et la gélose PMXMP[6].

Caractères biochimiques

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Comme la plupart des Enterobacterales ce sont des bactéries oxydase négatives et catalase positives. Avec les autres bactéries de la famille des Morganellaceae elles ont en commun l'absence d'arginine dihydrolase (ou arginine décarboxylase) et un résultat négatif à la réaction de Voges-Proskauer[4].

Elles partagent de plus les caractéristiques suivantes avec les genres Morganella et Proteus (tribu des Proteeae)[3],[7] :

Les Providencia partagent aussi avec les Morganella l'absence de lipase, l'incapacité à hydrolyser la gélatine et l'aptitude à acidifier le D-mannose, mais s'en distinguent par l'absence d'ornithine décarboxylase. Elles ne produisent pas de sulfure d'hydrogène (H2S) et l'uréase n'est constante que chez une seule espèce (P. rettgeri).

Le tableau suivant récapitule d'autres caractères, variables au sein du genre, qui peuvent contribuer au diagnostic d'espèce par une approche phénotypique[7],[8] :

Phénotype biochimique de quelques espèces de Providencia
production indole utilisation citrate activité uréase acidification

L-rhamnose

acidification

maltose

acidification

tréhalose

acidification

D-adonitol

acidification

D-arabitol

acidification

D-mannitol

acidification

myo-inositol

P. alcalifaciens + + +
P. heimbachae + ± + + ±
P. rettgeri + + + ± + + + +
P. rustigianii + ±
P. stuartii + + ± + +


Pathogénicité

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En pathologie humaine

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P. alcalifaciens est un pathogène humain reconnu, notamment responsable de gastro-entérites qui frappent les voyageurs[6] ou surviennent sur le mode épidémique dans les collectivités (TIAC)[9],[10],[11]. Leur fréquence est probablement sous-estimée car la recherche de Providencia est rarement réalisée par les laboratoires d'analyses médicales dans ce contexte[12].

P. stuartii et P. rettgeri peuvent infecter tous les sites anatomiques avec une prépondérance d'infections urinaires (en particulier sur sonde urinaire) et de bactériémies[3],[8]. P. heimbachae et P. rustigianii sont très rarement la cause d'infections humaines.

Chez l'animal

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P. alcalifaciens a été identifié comme agent étiologique d'entérites nécrosantes chez des chiots[13] et de pneumopathies hémorragiques chez des porcelets[14], fatales dans les deux cas.

P. sneebia et P. burhodogranariea sont deux espèces isolées de la mouche du vinaigre Drosophila melanogaster et plus précisément de son hémolymphe, liquide normalement stérile qui constitue le milieu intérieur de l'insecte[15]. L'infection par P. sneebia est presque toujours létale et cette virulence particulière semble s'expliquer par une aptitude de la bactérie à éviter le système immunitaire de la mouche, ce qui se traduit entre autres par une sécrétion diminuée de peptides antimicrobiens[16]. D'autres travaux ont mis en évidence le rôle prépondérant et spécifique de certains de ces peptides, les diptéricines, dans l'immunité spécifique de cette même mouche vis-à-vis de P. rettgeri. En effet l'inactivation (par la technique CRISPR-Cas9) des gènes de ces peptides suffit à induire une susceptibilité marquée à l'infection alors que les insectes qui possèdent des gènes fonctionnels sont immunisés[17],[18].

P. vermicola a été isolée de formes juvéniles de Steinernema thermophilum, un ver nématode parasite des insectes.

Liste d'espèces

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Selon la LPSN[1], les espèces suivantes sont recensées en juin 2021 :

Notes et références

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(en) Cet article est partiellement ou en totalité issu de l’article de Wikipédia en anglais intitulé « Providencia (bacterium) » (voir la liste des auteurs).
  1. a b et c https://lpsn.dsmz.de/genus/providencia, consulté le 03/06/21.
  2. Ewing WH « The tribe Proteeae: its nomenclature and taxonomy » Int J Syst Evol Microbiol 1962, vol. 12, n. 3, p. 93-102. https://doi.org/10.1099/0096266X-12-3-93
  3. a b c et d Manos J & Belas R (2006) The Genera Proteus, Providencia, and Morganella. In: Dworkin M, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer KH, Stackebrandt E (eds) The Prokaryotes. Springer, New York, NY. https://doi.org/10.1007/0-387-30746-X_12
  4. a et b Adeolu M et al. « Genome-based phylogeny and taxonomy of the 'Enterobacteriales': proposal for Enterobacterales ord. nov. divided into the families Enterobacteriaceae, Erwiniaceae fam. nov., Pectobacteriaceae fam. nov., Yersiniaceae fam. nov., Hafniaceae fam. nov., Morganellaceae fam. nov., and Budviciaceae fam. nov » Int J Syst Evol Microbiol. 2016;66(12):5575-5599. Accès libre.
  5. Senior BW « Media for the detection and recognition of the enteropathogen Providencia alcalifaciens in faeces » J Med Microbiol. 1997;46(6):524-527. https://doi.org/10.1099/00222615-46-6-524
  6. a et b Yoh M et al. « Importance of Providencia species as a major cause of travellers’ diarrhoea » J Med Microbiol. 2005;54(11):1077-1082. Accès libre.
  7. a et b O'Hara CM, Brenner FW & Miller JM « Classification, Identification, and Clinical Significance of Proteus, Providencia, and Morganella » Clin Microbiol Rev. 2000;13(4):534-546. Accès libre.
  8. a et b Forsythe SJ, Abbott SL & J Pitout J (2015) Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, Cronobacter, Serratia, Plesiomonas, and Other Enterobacteriaceae. In: Jorgensen JH, Pfaller MA (eds) Manual of clinical microbiology. 11th edition. ASM Press, Washington, DC. https://doi.org/10.1128/9781555817381
  9. Murata T et al. « A large outbreak of foodborne infection attributed to Providencia alcalifaciens » J Infect Dis. 2001;184(8):1050-1055. Accès libre
  10. Chlibek R et al. « Diarrhea outbreak among Czech Army Field Hospital personnel caused by Providencia alcalifaciens » J Travel Med. 2002;9(3):151-152. Accès libre.
  11. Shah MM et al. « First report of a foodborne Providencia alcalifaciens outbreak in Kenya » Am J Trop Med Hyg. 2015;93(3):497-500. Accès libre.
  12. Shah MM et al. « Epidemiology and Pathogenesis of Providencia alcalifaciens Infections » Am J Trop Med Hyg. 2019;101(2): 290–293. Accès libre.
  13. Mohr AJ et al. « Primary bacterial enteritis caused by Providencia alcalifaciens in three dogs » Vet Rec. 2002;150(2):52-53. https://doi.org/10.1136/vr.150.2.52
  14. Wang X et al. « Pathogenic Providencia alcalifaciens strain that causes fatal hemorrhagic pneumonia in piglets » Curr Microbiol. 2014;68(3):278-284. https://doi.org/10.1007/s00284-013-0470-y
  15. Juneja P, Lazzaro BP « Providencia sneebia sp. nov. and Providencia burhodogranariea sp. nov., isolated from wild Drosophila melanogaster » Int J Syst Evol Microbiol. 2009;59(5):1108-1111. https://doi.org/10.1099/ijs.0.000117-0
  16. Galac MR, Lazzaro BP « Comparative pathology of bacteria in the genus Providencia to a natural host, Drosophila melanogaster » Microbes Infect. 2011;13(7):673-683. Accès direct.
  17. Unckless RL, Howick VM & Lazzaro BP « Convergent balancing selection on an antimicrobial peptide in Drosophila » Curr Biol. 2016;26(2):257-262. Accès direct.
  18. Hanson MA et al. « Synergy and remarkable specificity of antimicrobial peptides in vivo using a systematic knockout approach » eLife 2019;8:e44341. https://doi.org/10.7554/eLife.44341.001

Liens externes

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